微流控芯片作為微型化液體環(huán)境的細胞培養(yǎng)裝置
微流控芯片作為微型化液體環(huán)境的細胞培養(yǎng)裝置,具有穩(wěn)定的技術(shù)及其功能,近年來在 生物工程、生物醫(yī)藥、醫(yī)療檢測領(lǐng)域有著很好的延伸前景,每種領(lǐng)域里都有相應(yīng)的微流控芯片類型,衍生出了較多種類的微流控芯片。同時,每種不同材料的微流控芯片都具有其相應(yīng)的材料特性,也有不同的檢驗檢測方法。iGEM 是來自麻省理工大學的世界性合成生物學競賽,比賽倡導(dǎo)通過合理的合成生物學改造來解決實際遇到的問題。2017 年是 iGEM_BIT 隊與 XMU-CHINA 合作的第一年,本文主要介紹了兩隊的微流控芯片制作、檢測方法以及實驗成果展示。
在 10~100μm 寬的溝道系統(tǒng)中對流體或氣體進行操控的技術(shù)被稱為微流控技術(shù),以微流控技術(shù)為核心、通過 MEMS技術(shù)加工出的應(yīng)用于生物、化學、生物醫(yī)學等領(lǐng)域的芯片型微全分析系統(tǒng)被稱為微流控芯片。20 世紀 90 年代中后期,隨著微制作技術(shù)的發(fā)展,微流控芯片研究經(jīng)歷了一個迅速發(fā)展的時期,制作技術(shù)也日臻完善,各種基于微流控芯片的單元操作技術(shù)也層出不窮。進入到 21 世紀初后期,大規(guī)模集成成為微流控芯片的發(fā)展潮流。目前微流控芯片已經(jīng)成為發(fā)展最為迅猛的分析研究技術(shù)。
目前常見微流控芯片主要有三個種類:單晶硅片、石英和玻璃、高分子聚合物。
最早的微流控芯片是用單晶硅制作。這主要得益于成熟的微電子和微機械加工技術(shù)。玻 璃微流控芯片具備優(yōu)良的光學性能和支持電滲流特性,易于表面改性,可直接借鑒傳統(tǒng)的毛 細管電泳分析技術(shù),因此在微流控芯片發(fā)展初期受到更多重視并得到相應(yīng)發(fā)展,至今仍是最 廣泛使用的芯片之一。用玻璃材料制作微流控芯片具有很多的優(yōu)越性,但聚合物以其較玻璃 價廉,制作方法簡單,生產(chǎn)成本低,可制作一次性使用芯片等特點,正日益為人們所關(guān)注。
為了實現(xiàn) 2017iGEM_BIT 隊伍生物部分的工業(yè)大規(guī)?;a(chǎn),iGEM_BIT 隊伍自主設(shè)計研 發(fā)了微流控芯片。 微流控芯片為整套生物學檢測方法提供了兩個反應(yīng)腔室,兩個腔室分別是用于磁珠適配體的檢測和工程菌的熒光表達。通過真空凍干法將適配體和工程菌菌液預(yù)先分步凍干于芯片內(nèi),將使得芯片的快速檢測程度得到很大的提升。此外,設(shè)計的儀器采用了 同時能檢測紅光和綠光的共聚焦式光學通路(光學器件來自于公司名),有效的降低了光學 儀器占用的空間,又不影響光學檢測精度。儀器中配套微流控芯片負壓法注樣而使用的蠕動泵,最低泵速為 6ul/min,在 39ul/min 時達到最好精度 (±2%)。
在項目研發(fā)過程中,我們設(shè)置并進行了以下的實驗:
1、 微流控芯片及芯片外工程菌的生長曲線測定
2、 微流控芯片及芯片外含阿拉伯糖誘導(dǎo)型啟動子的工程菌在阿拉伯糖誘導(dǎo)下報告基因的 表達情況(芯片外測試涉及到無氧情況的影響)
3、 微流控芯片內(nèi)磁珠適配體凍干實驗(包括芯片外凍干及與甲胎蛋白反應(yīng)情況)
4、 微流控芯片的光學檢測(定性)
5、 微流控芯片的熱學檢測(定量)
6、 光學儀器的模擬
實驗展示:
一、 微流控芯片及芯片外工程菌的生長曲線測定
實驗?zāi)康模罕碚骷毦谛酒系纳L情況,評估芯片的細菌培養(yǎng)能力
設(shè)計思路:通過 OD 值與熒光強度來表征細菌的生長狀況并通過與芯片外(培養(yǎng)試管內(nèi))細 菌生長情況對比反映芯片的細菌培養(yǎng)能力。用于測定這兩個參數(shù)的酶標儀不支持對芯片的直 接檢測,因此需設(shè)法將芯片內(nèi)菌液排出??紤]到芯片內(nèi)菌液的體積定量問題與余液問題,我 們采用了排出液體——定量取液——稀釋的方法從芯片內(nèi)取出菌液置于 96 孔板上進行檢測。
實驗設(shè)計:變量設(shè)計:時間(每 2 小時測定一次)
對照設(shè)計:細菌生長場所:芯片內(nèi)與培養(yǎng)試管內(nèi)
結(jié)果指標:由測量結(jié)果繪制的 OD-時間曲線與熒光強度-時間曲線
實驗材料:7ml LB 無抗培養(yǎng)基、無菌水、氯酶抗生素(與菌種抗性有關(guān))、負二十攝氏度 甘油保藏的菌種、注射器、微流控芯片(使用直徑 12mm 圓形培養(yǎng)腔,腔室高度 0.4mm, 準備數(shù)量由預(yù)計測量時間與測量間隔決定)、96 孔板、1.5ml 離心管(每次檢測 2 個)
實驗步驟:
①:芯片預(yù)處理
使用注射器以 100μl/min 的流速分別注入 5ml 無水乙醇和 3ml PBS 緩沖液,隔夜晾干。
注意:
①:芯片的預(yù)處理對于芯片培養(yǎng)細菌的能力有很大影響
②:乙醇可沖洗掉未完全固化的光膠
③:PBS 的作用在于沖洗掉殘留乙醇并對芯片腔室表面進行處理,利于細菌生存
②:隔夜復(fù)蘇菌種 J-D-P(plux-RBS-LuxR-RBS-Luxl-RBS-LacI-RBS-GFP-T)(可表達 GFP) 7ml 無抗培養(yǎng)基加入 3‰的氯酶(21μl)和 100μl 負二十攝氏度甘油保藏的菌種,在 37℃ 搖床隔夜培養(yǎng)。
③:轉(zhuǎn)接菌種
7ml 無抗培養(yǎng)基加入 3‰的氯酶(21μl)和 100μl 隔夜培養(yǎng)的菌液,在 37℃搖床培養(yǎng) 1h。
④:開始檢測,注入菌液
在培養(yǎng)試管中均勻取 100μl 菌液點樣在 96 孔板上,點三次樣,檢測 OD 值和熒光強度。 在培養(yǎng)試管中均勻取 100μl 菌液加入潔凈 1.5ml 離心管中,用注射器吸取菌液注入芯片, 將芯片置于槍頭盒內(nèi),放入 37℃搖床培養(yǎng)。
注意:由于實驗過程中未使用泵進行注射,因此此注射方式為手動注射,要求用力盡量均勻 并稍微傾斜芯片防止注射過程中產(chǎn)生氣泡
⑤:排出菌液檢測
兩個小時后,取出芯片,用注射器注入空氣,排出菌液至 1.5ml 潔凈離心管。從離心管與 培養(yǎng)試管中分別吸取 70μl 的菌液至另外一潔凈 1.5ml 離心管,另吸取 280μl 無菌水稀 釋菌液。再從稀釋的菌液中取 100μl 點樣于 96 孔板上,各點三次樣,檢測 OD 值和熒光 強度。
注意:可傾斜芯片使液體順利排出
⑥:重復(fù)⑤每兩個小時測一次。
⑦:畫出 OD-時間曲線和熒光強度-時間曲線。
實驗結(jié)果:
圖 1 12 小時培養(yǎng)得到的大腸桿菌的 OD-時間曲線和熒光強度-時間曲線
結(jié)果分析:
由曲線可以看出,芯片內(nèi) OD 曲線在 8h 后有比較明顯的下滑,芯片內(nèi)的熒光強度在 4-12h 也呈下降趨勢,且芯片內(nèi)的 OD 值整體低于離心管內(nèi) OD 值。我們分析可能的原因在于:①: 芯片內(nèi)環(huán)境相對試管中較為狹窄,對細菌的代謝活動有一定影響。②:芯片透氣性不足,菌 群數(shù)量達到一定程度時面臨缺氧問題。
二、微流控芯片及芯片外含阿拉伯糖誘導(dǎo)型啟動子的工程菌在阿拉伯 糖誘導(dǎo)下報告基因的表達情況(芯片外測試涉及到無氧情況的影響)
模塊一:探究芯片內(nèi)缺氧環(huán)境對細菌生長表達的影響
實驗設(shè)計:由于之前在芯片中的細菌的培養(yǎng)實驗結(jié)果與離心管內(nèi)培養(yǎng)的結(jié)果相差較大,經(jīng)過 分析我們認為可能芯片內(nèi)的缺氧環(huán)境對細菌的生長和表達產(chǎn)生了影響。所以我們設(shè)計了芯片 外的模擬缺氧環(huán)境來探究這種影響。并且使用了受阿拉伯糖誘導(dǎo)表達的大腸桿菌作為菌株, 設(shè)置不同濃度的阿拉伯糖濃度(10g/L、5g/L、1g/L、0.1g/L、0.01g/L、0g/L)。
實驗材料:受阿拉伯糖誘導(dǎo)表達的大腸桿菌(pbad-RBS-LacI-RBS-GFP-T-plac-RBS-RFP-T)、 氨芐抗生素(AMP)、100mg/ml 的阿拉伯糖溶液、7ml 無抗 LB 液體培養(yǎng)基、無菌水、PCR 管、 1.5ml 離心管、96 孔板。
實驗步驟:
①加入材料,復(fù)蘇細菌
在 7ml 無抗 LB 培養(yǎng)基中分別加入 100μl 甘油保存的菌種、1‰的 AMP(7μl), 再分別加入 0.7μl、7μl、70μl、350μl、700μl 的 100mg/ml 的阿拉伯糖溶 液。置于 37℃搖床培養(yǎng)復(fù)蘇 1h。
②分裝入 PCR 管和離心管
取出復(fù)蘇的菌,分別加入 100μl 吹勻菌液至 1.5ml 離心管(每一個梯度阿拉伯 糖各四管),250μl 吹勻菌液至 PCR 管(基本加滿,每一個梯度阿拉伯糖各四管)。 在放置板上放置好,置于 37℃搖床培養(yǎng)。另取 100μl 菌液在 96 孔板點樣,每 一個梯度點三次,檢測 OD 和熒光。
③稀釋檢測
每兩個小時取出每個濃度的 PCR 管和離心管,各取出 70μl 置于另一潔凈 1.5ml 離心管,稀釋 5 倍,取 100μl 菌液在 96 孔板點樣,各點三次,檢測 OD 和熒光。
④拷出數(shù)據(jù),畫出生長表達曲線。
實驗結(jié)果:
圖 2 本次的阿拉伯糖的誘導(dǎo)試驗:離心管和 PCR 管內(nèi)大腸桿菌的生長曲線和熒光曲線 圖 3 以前的阿拉伯糖的誘導(dǎo)實驗:96 孔板內(nèi)大腸桿菌的熒光曲線
實驗結(jié)果表明缺氧環(huán)境下細菌的生長和表達都用一定的下降,這的確是在芯片內(nèi)培養(yǎng)菌 和在外界培養(yǎng)的一個較大不同,關(guān)于阿拉伯糖濃度對大腸桿菌誘導(dǎo),對比之前所作實驗(探 究阿拉伯糖對工程菌的熒光表達的影響)可以發(fā)現(xiàn)阿拉伯糖的誘導(dǎo)并非濃度越高越有效。
一、 微流控芯片內(nèi)磁珠適配體凍干實驗(包括芯片外凍干及與甲胎蛋 白反應(yīng)情況)
微流控芯片的光學檢測(定性)
實驗?zāi)康模翰榭葱酒墓鈱W分布
實驗設(shè)備:3 個芯片中的 6 個腔室、一支 1mL 注射器、4 個離心管。
實驗材料:熒光微球蛋白溶液、熒光素鈉溶液
實驗步驟:實驗分為兩個部分:一、定性部分 二、定量部分
定性部分
1、先將熒光相比熒光素鈉較強的熒光微球蛋白 50uL 溶液注入芯片。
2、芯片在注射過程中保持傾斜 30°角,實驗人在注入過程中盡量保持注射過程 緩慢而勻速。
3、為了做比對,選擇將濃度不變的熒光微球直接滴加到載玻片上,觀察熒光分 布。
4、在原載玻片上蓋上蓋玻片,再觀察熒光分布。
定量分布
1、稱取 0.3763g 的熒光素鈉加入到 10mL 的蒸餾水中,配成 0.1mol/L 的熒光素 鈉溶液。
2、將 0.1mol/L 的熒光素鈉溶液分別稀釋 7000 倍、10000 倍、20000 倍分別得到 熒光素鈉溶液①、②、③。
3、各抽取熒光素鈉溶液①、②、③100uL 加入到 96 孔板中進行熒光值的測量(增 益選 50)。 3、將熒光素鈉溶液①、②、③分別加入到芯片中,觀察熒光分布。
實驗結(jié)果:
表 3 熒光素鈉溶液的熒光值
實驗結(jié)論:
一、首先比較了圖一、圖二我們發(fā)現(xiàn)我們的芯片透光性很好,在芯片內(nèi)和在載玻片上的熒光 是差不多的。
二、通過圖 3,即蓋上了蓋玻片以后,我們發(fā)現(xiàn)熒光強度大大減小,本來為了做對比,應(yīng)該 找一個能裝 50uL 的槽蓋上載玻片進行觀察??墒怯捎跅l件較為嚴苛,未能實驗,但是我們 結(jié)合第一個結(jié)論,依然可以得出光膠并未太多的影響光的分布
三、通過圖 4、圖 5、圖 6,我們可以發(fā)現(xiàn)芯片的透光性還是可以的。結(jié)合圖 7 我們的熒光 測量,則定量的說明了我們芯片的透光性良好
四、微流控芯片的熱學檢測(定性/量)
光學儀器的模擬
實驗?zāi)康模候炞C我們設(shè)計的檢測光路,根據(jù)驗證結(jié)果優(yōu)化光路
設(shè)計思路:使用實際元件進行光路驗證存在諸多不便:首先光學元件價格較高,盲目進行實 驗可能造成不必要損失,其次,根據(jù)驗證結(jié)果不斷調(diào)整元件位置的過程較為費時費力。為了 避免時間與金錢的浪費,我們采用光學仿真的方法來為我們后續(xù)的光路搭建提供指導(dǎo)與參考。
實驗設(shè)計:利用 Zemax 軟件,根據(jù) thorlabs 網(wǎng)站上提供的元件參數(shù)進行模擬光路搭建過程, 并通過在軟件中查看檢測面的光圈分布評判我們光路的效果,并以此為根據(jù)對我們的光路進 行改良。
使用元件:平凸透鏡(2 個)型號:LA1304,焦距:4mm,曲率半徑:20.6mm 二向色鏡(實際仿真過程中表現(xiàn)為反射面)
實驗過程:
圖 13 光學仿真使用的 ZEMAX 界面
圖 14 光學仿真中的光路圖
仿真過程主要出現(xiàn)了兩個問題:
1、光圈過小
解決方法:光圈過小,最先想到的是兩個方面:一、透鏡折射率過大,二、檢測面與二色鏡 靠的太近,所以最直接的是將檢測面的 Y 值(即縱坐標值)由 30 變?yōu)?40. 此時出現(xiàn)了第二個問題
2、光圈太暗
解決方法:從上圖中我們發(fā)現(xiàn)光的發(fā)散角過大,導(dǎo)致很多光都照到了管壁,所以減小發(fā)散角 或增加光闌即可,于是得到最終結(jié)果。
圖 15 光學仿真中遇到的問題
圖 16 偵測器結(jié)果
從圖 2 我們可以得知光路仿真結(jié)果較好,光的分布較為均勻,光的強度較弱,是因為光源選 的功率只有 1W,簡單地增加光源強度即可,此處不再贅述。
結(jié)論:
我們選用的 LA1304 透鏡符合我們的基本要求,達到我們較為理想的結(jié)果,仿真成功。