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微流控芯片毛細(xì)管電泳在蛋白質(zhì)分離分析中的應(yīng)用研究進展

汶顥股份微流控毛細(xì)管電泳芯片

汶顥微流控毛細(xì)管電泳芯片

1.微流控芯片毛細(xì)管電泳的特點

芯片毛細(xì)管電泳技術(shù)將常規(guī)的毛細(xì)管電泳操作在芯片上進行,利用玻璃、石英或各種聚合物材料加工微米級通道,以高壓直流電場為驅(qū)動力,對樣品進 行進樣、分離及檢測。它與常規(guī)毛細(xì)管電泳的分離 原理相同,因此在分離生物大分子樣品方面具有優(yōu) 勢。此外,與常規(guī)毛細(xì)管電泳系統(tǒng)相比,芯片毛細(xì)管電泳系統(tǒng)還具備分離時間短、分離效率高、系統(tǒng)體積 小且易實現(xiàn)不同操作單元的集成等優(yōu)點 。芯片毛細(xì)管電泳的上述優(yōu)點使其成為蛋白質(zhì)分離分析中的重要手段之一。

Rodriguez等曾分別在常規(guī)毛細(xì)管、短毛細(xì)管和玻璃芯片上,以區(qū)帶電泳的分離模式,對人免疫球蛋白 G IgG>)和熒光素異硫氰酸酯(FITC)的反應(yīng)混合物進行分離,以比較3種系統(tǒng)的分離性能。 使用有效分離長度為35cm的長毛細(xì)管和有效分離長度為6cm的短毛細(xì)管時,其分離時間分別為335s84s,理論塔板數(shù)分別為27750 41816。 當(dāng)使用有效分離長度僅為2.8cm的玻璃芯片時, 分離時間縮短至16s,理論塔板數(shù)達到49000。由此可以看出采用玻璃芯片進行毛細(xì)管區(qū)帶電泳在分 離速度和柱效上明顯優(yōu)于常規(guī)毛細(xì)管電泳系統(tǒng)。

 

2.微流控芯片毛細(xì)管電泳分離蛋白質(zhì)的模式

目前,報道的芯片毛細(xì)管電泳分離蛋白質(zhì) 主要采用區(qū)帶電泳、凝膠電泳、等電聚焦、膠束電動色譜及二維電泳等模式。

2.1芯片毛細(xì)管區(qū)帶電泳

毛細(xì)管區(qū)帶電泳是芯片毛細(xì)管電泳分離蛋白質(zhì)的一種最基本的分離模式。它基于不同的蛋白質(zhì)分子在電場中的遷移速率不同而實現(xiàn)分離,是一種簡 單、快速的分離方法。采用區(qū)帶電泳分離模式已成 功地分離了多種蛋白質(zhì)樣品。

在芯片毛細(xì)管電泳分離蛋白質(zhì)的研究中所要解決的一個重要問題就是通道表面對大分子蛋白質(zhì)的吸附問題。蛋白質(zhì)與芯片通道內(nèi)壁之間的微小吸附效應(yīng)就會降低蛋白質(zhì)的分離效率,引起峰形變寬拖尾,影響分離的重現(xiàn)性。在毛細(xì)管區(qū)帶電泳分離模 式下,一般采用通道內(nèi)壁永久改性和緩沖液中加入添加劑進行 態(tài)修飾兩種方法來抑制蛋白質(zhì)的吸附。

Wu等采用多層88%水解聚丙烯醇(PVA 修飾PDMS芯片,以區(qū)帶電泳模式有效分離了兩種堿性蛋白質(zhì)(溶菌酶和核糖核酸酶)以及兩種典型的酸性蛋白質(zhì)( 牛血清白蛋白和β-乳球蛋白)。該涂層在ph3-11范圍內(nèi)均可抑制電滲流的產(chǎn)生和蛋白的吸附作用,并且效果穩(wěn)定,連續(xù)運行70次后分離效果仍然很好。該研究組隨后又采用自組裝方法在PDMS芯片通道表面加工環(huán)氧修飾的聚合物涂層抑制蛋白質(zhì)的吸附,成功地分離溶菌酶和核糖核酸酶A。

Chiem等在運行緩沖液中加入了無機電解質(zhì) ,NaCI和中性表面活性劑吐溫20 來抑制蛋白質(zhì)的吸附,利用芯片毛細(xì)管區(qū)帶電泳進行了單克隆抗體的分離分析。

 

2.2芯片毛細(xì)管凝膠電泳

在蛋白質(zhì)組學(xué)和蛋白質(zhì)分離研究中,凝膠電泳是廣泛使用的分離技術(shù)。它是以凝膠等聚合物作為分離介質(zhì),利用其網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)并依據(jù)被測組分的分子體積不同而進行分離的一種分離模式。在芯片上采用凝膠電泳模式分離蛋白質(zhì),更有利于實現(xiàn)分離操作的高速度和高效率。Yao等[采用十二烷基磺酸鈉(SDS)凝膠電泳分離模式,對比了芯片SDS 細(xì)管凝膠電泳與常規(guī)毛細(xì)管凝膠電泳系統(tǒng)分離蛋白質(zhì)的性能,結(jié)果表明前者的分離效率明顯優(yōu)于后者, 分離時間也明顯低于后者。

與常規(guī)毛細(xì)管凝膠電泳相同,芯片毛細(xì)管凝膠電泳常用的篩分介質(zhì)也分為凝膠和非膠聚合物溶液兩種。交聯(lián)聚丙烯酰胺凝膠是廣泛使用的一種凝膠篩分介質(zhì),Herr等首次將傳統(tǒng)的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離蛋白質(zhì)的方法移植到芯片上,采用光聚合的方法在芯片通道內(nèi)制備濃度為6%的交聯(lián)聚丙烯酰胺凝膠作為篩分介質(zhì),在30s的時間內(nèi)對相對分子質(zhì)量在6500~39000之間的 5種蛋白質(zhì)進行分離,分離距離僅為4mm,分離效率達到理論塔板數(shù) 4.41x十的五次方。該研究組后期又在微通道內(nèi)制備了濃度為 22%的交聯(lián)聚丙烯酰胺膜用于蛋白質(zhì)樣品的預(yù)富集,有效富集了相對分子質(zhì)量為(12000~205000)的蛋白質(zhì)分子,并采用濃度為8%的交聯(lián)聚丙烯酰胺凝膠作為篩分介質(zhì)進行分離。

在芯片毛細(xì)管凝膠電泳中,通道內(nèi)壁對蛋白質(zhì)的吸附仍是需要解決的重要問題。Bousse等使 聚二甲基丙烯酰胺(PDMA)物理涂覆玻璃芯片微通道內(nèi)壁,將電滲流降低, SDS凝膠電泳的分離模式在40s內(nèi)分離了bio-rad公司的蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)樣品,分離效率達到十的七次方塔板/M。Nagata在PMMA芯片中使用了PEG 涂層,以 5%線性聚丙烯酰胺為篩分介質(zhì),在分離長度為 3mm的通道內(nèi)實現(xiàn)了胰蛋白酶抑制劑、牛血清白蛋白和β-半乳糖苷酶3種蛋白質(zhì)的高速分離, 分離時間僅為8s。

2.3芯片等電聚焦分離

芯片等電聚焦分離蛋白質(zhì)的原理與常規(guī)毛細(xì)管 等電聚焦基本相同,都是依據(jù)蛋白質(zhì)的等電點( pI 不同而進行分離。Hofmann等首次將毛細(xì)管等電聚焦技術(shù)移植于玻璃芯片,應(yīng)用于蛋白質(zhì)分析。 Li等在PDMS芯片和聚碳酸酯(PC)芯片上,采用等電聚焦模式分離了牛血清白蛋白和增強型綠色熒光蛋白(EGFP)。Das等采用高聚物芯片,在等電聚焦電泳模式下優(yōu)化了分離長度及電壓條件, 最終在長1.9cm的通道內(nèi)于1.5min內(nèi)分離了綠熒光蛋白和R藻紅蛋白,分離電壓為500V。Cui等在 PDMS芯片上采用等電聚焦分離模式成功分離了重組綠熒光蛋白、異藻青蛋白和藻紅蛋白。 該作者還報道,通過改變樣品和分離介質(zhì)中添加劑 甲基纖維素的濃度,可以改變完成蛋白質(zhì)分離所需要的通道距離。

2.4芯片膠束電動毛細(xì)管電泳

膠束電動毛細(xì)管電泳是毛細(xì)管電泳與膠束增溶色譜相結(jié)合的分離技術(shù),其原理是在裝有膠束溶液的通道內(nèi),溶質(zhì)組分在電場力的作用下根據(jù)其在膠 束相和水相之間的分配不同而產(chǎn)生分離。Jin等在玻璃芯片上采用膠束電動色譜的分 離模式,以 Bio-Rad 公司的CE-SDS緩沖液作為分離介質(zhì),成功實現(xiàn)了相對分子質(zhì)量在 14400~200000之間的8種蛋白質(zhì)的分離。Doud等采用 Brij35修飾PDMS 芯片通道,在膠束電動色譜的分離模式下實現(xiàn)了葡萄糖氧化酶和肌紅蛋白的有效分離。該芯片涂層在ph2~6范圍內(nèi)可顯著降低蛋白質(zhì)大分子的吸附, 并減少檢測蛋白質(zhì)所需的沖洗時間,從而提高分離效率。Huang等在 PDMS芯片中采用0.1% 十二烷基麥芽糖(DDM)和 0.03%SDS作為混合膠束,對通道進行動態(tài)修飾,有效地抑制了蛋白質(zhì)的吸附,控制了電滲流,使蛋白質(zhì)在非變性條件下得到有效分離。

2.5芯片二維電泳分離

芯片毛細(xì)管電泳應(yīng)用的成功促進了高速高效的 芯片二維電泳技術(shù)的發(fā)展。對于多組分的復(fù)雜蛋白 質(zhì)樣品,采用傳統(tǒng)的一維分離方法通常無法滿足要 求,需要采用二維分離技術(shù)來提高分離效率,增加峰 容量。與傳統(tǒng)的毛細(xì)管電泳系統(tǒng)相比,在芯片上進行二維電泳分離,可以通過設(shè)計芯片通道結(jié)構(gòu)實現(xiàn) 通道的直接交叉或連通,而無需制作復(fù)雜的二維毛細(xì)管電泳接口,從而避免了因在接口處存在死體積 而導(dǎo)致的譜帶擴展現(xiàn)象。

在芯片二維電泳分離蛋白質(zhì)的研究中,第一維分離模式多采用等電聚焦模式。Chen等制作了二維毛細(xì)管電泳PDMS芯片,利用第一維的等電聚焦和第二維的凝膠電泳對熒光標(biāo)記的牛血清白蛋白和碳酸酐酶以及德科薩斯紅標(biāo)記的卵清蛋白進行分離分析。Li等設(shè)計了等電聚焦和凝膠電泳聯(lián)用 的二維分離高聚物芯片。蛋白質(zhì)樣品在完成第一維的等電聚焦分離后,可在多個并行的通道內(nèi)完成第 二維的凝膠電泳分離。整個分離過程在 10min內(nèi)完成,峰容量達到1700。Herr等研制了采用十字通道構(gòu)型的等電聚焦,自由區(qū)帶電泳二維芯片系統(tǒng),芯片通道寬200微米20微米,待測樣品在橫向通道中進行等電聚焦分離,分離后的樣品區(qū)帶在電場驅(qū)動下進入縱向區(qū)帶電泳通道中進行第二維分離。系統(tǒng)采用熒光顯微鏡成像的方法對分離性能進行了評價,5min內(nèi)分離的峰容量達到1300。Wang 等通過在PDMS芯片中制作微閥來防止一維等電聚焦和二維凝膠電泳系統(tǒng)之間的分離緩沖液相混合,在20min內(nèi)有效分離了4種標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)。也有報道在PMMA 芯片上進行SDS凝膠電泳和膠束電動毛細(xì)管電泳相結(jié)合的蛋白質(zhì)二維電泳分離。 該系統(tǒng)在12min內(nèi)完成10種蛋白質(zhì)的分離,峰容量約為1000

2.6芯片自由流電泳

除上述分離模式外,芯片自由流電泳也是芯片電泳分離蛋白質(zhì)的重要方法。芯片自由流電泳是指在芯片中通過外加電場使樣品隨緩沖液連續(xù)流動的 同時沿電場方向進行電遷移,從而按照電泳淌度不同實現(xiàn)分離的電泳分離模式。,Raymond 等采用芯片自由流電泳模式分離了人血清蛋白、緩激肽和核糖核酸酶A,其分離長度為3.1cm,流出時間為62s。Kobayashi等采用自由流電泳的分離模式 在一個體積為56.5mmx35mmx30微米的微分離室(60微升)中實現(xiàn)了持續(xù)的蛋白質(zhì)分離,并用羥丙基甲基纖維素涂覆來抑制蛋白質(zhì)吸附,在25min 內(nèi)有效分離了細(xì)胞色素C 和肌紅蛋白。最近,Kohl-heyer等制作了一種自由流等電聚焦分離蛋白質(zhì)的玻璃芯片,成功地將人血清白蛋白(pI=4.4)與等電聚焦標(biāo)記物(pH3和9)分離。

 

微流控芯片毛細(xì)管電泳系統(tǒng)應(yīng)用于蛋白質(zhì)的分離分析具有突出的優(yōu)越性,特別是在臨床檢驗及現(xiàn)場監(jiān)測等方面的應(yīng)用具有良好的發(fā)展前景,同時,其對分析儀器的集成化、微型化與便攜化的發(fā)展也具有重要意義。據(jù)文獻報道,Renzi等已經(jīng)研制出手持式的微流控芯片電泳分離蛋白質(zhì)裝置。該裝置由電泳芯片、小型光誘導(dǎo)熒光檢測系統(tǒng)以及高壓電源等組成,其體積僅為11.5cmx11.5cmx19.0cm,可用于現(xiàn)場分析、床旁醫(yī)學(xué)診斷以及取證 分析。近年來,國內(nèi)已有關(guān)于利用芯片毛細(xì)管電泳進行臨床尿蛋白和脂蛋白檢測的報道。最 近,Pandey等使用 Caliper公司和Agilent公司的P200蛋白質(zhì)芯片來檢測微量的白蛋白尿,將蛋白質(zhì)的電泳分離和熒光檢測集成化、自動化,實現(xiàn)了其在臨床實驗室的應(yīng)用。

目前,很多科研工作者正致力于微流控芯片毛細(xì)管電泳與質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)的研究,以進一步提高系統(tǒng)對復(fù)雜樣品的分離分析能力。上述系統(tǒng)在蛋白質(zhì)分離分析及蛋白質(zhì)組研究中有廣闊的應(yīng)用前景。尤其是對于復(fù)雜蛋白質(zhì)樣品的多維分離分析,芯片毛細(xì)管電泳以其快速高效的特點,可以作為其中的一維分離方法,顯著提高蛋白質(zhì)的分析通量。相信隨 著研究的不斷深入及相關(guān)技術(shù)的不斷發(fā)展,微流控芯片毛細(xì)管電泳蛋白質(zhì)分離技術(shù)將日趨成熟,在生化分析、臨床診斷和蛋白質(zhì)組研究領(lǐng)域發(fā)揮重要的作用。(文章節(jié)選來源:浙江大學(xué)微分析系統(tǒng)研究所 文章編號:1000-8713(2008)03-0269-05 轉(zhuǎn)載僅供參考學(xué)習(xí)傳遞有用信息,版權(quán)歸原作者所有,如侵犯權(quán)益,請聯(lián)系刪除)




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